Пд 65 зубр: Пила циркулярная

Пила циркулярная

Преимущества

Описание

Усовершенствованная модель пилы серии Мастер. Улучшенная конструкция с более мощным двигателем обеспечивает пиление на глубину до 65 мм, что позволяет резать фанеру, панели и доски большинства типоразмеров. Эргономика рукояток делает работу удобной, а запас мощности и точность реза дарят удовольствие от работы

Применение

Для распиловочных работ по дереву и иным материалам (при установке соответствующего диска) под различными углами, а также под наклоном

На электроинструменты и бензотехнику «ЗУБР» действует расширенная 5-летняя гарантия. Служба качества контролирует процесс производства на каждом этапе.

Техническая информация

Артикул
Мощность, Вт	1600
Число оборотов, об/мин	4700
Диаметр диска, мм	190
Посадочный диаметр диска, мм	20
Количество зубьев	24
Глубина пропила под углом 90 градусов, мм	65
Глубина пропила под углом 45 градусов, мм	42
Регулировка глубины и угла пропила	есть
Регулировка оборотов	нет
Плавный пуск	нет
Поддержание постоянных оборотов под нагрузкой	нет
Возможность работать с направляющей шиной	нет
Возможность подключения пылесоса	есть
Лазерная направляющая	нет
Защита от перегрузки	нет
Блокировка шпиделя	есть
Тип основания	штам­по­ван­ное
Параллельный упор	есть
Быстрая замена щеток	есть
Длина кабеля, м	2
Напряжение питания, В/Гц	230 / 50
Габариты, см	34. 5х25.5х26
Масса изделия, кг	4.2
Масса в упаковке, кг	4.9
Комплектация
Пила циркулярная	1
Диск пильный (образец)	1
Направляющая	1
Ключ	1
Руководство по эксплуатации	1

Документация

Инструкция
(скачать pdf, 2. 24 МБ)

Рекламная брошюра
(скачать pdf, 5.54 МБ)

Инструкция для печати
(скачать pdf, 2.3 МБ)

ПД-65_Приложение к инструкции
(скачать pdf, 181.33 КБ)

ПД-65_Приложение к инструкции
(скачать pdf, 181.33 КБ)

Сопутствующие товары

Защита глаз и лица

Защита рук

Пильные диски

Защита органов слуха

Пила дисковая, 90°-65 мм, диск 190 мм, 1600 Вт, ЗУБР ПД-65 по цене 6 200 руб.

у официального партнера ЗУБР в России

Преимущества

• Надежное и производительное изделие для мастера




• Небольшой вес, компактность и увеличенная мощность




• Двигатель с запасом мощности и редуктор с увеличенным передаточным числом обеспечивают большую производительность и надежность




• Диск с твердосплавными напайками и оптимальным количеством зубьев для производительного пиления




• Блокировка шпинделя для быстрой замены диска




• Основная и дополнительная рукоятки с мягкими накладками и естественной эргономикой




• Сдвижной защитный кожух предохраняет оператора от травм




• Бесступенчатая регулировка глубины и угла пиления для точных работ




• Параллельный упор в комплекте для пиления «в размер»




• Патрубок подключения пылесоса для эффективного пылеотвода

Описание

Усовершенствованная модель пилы серии Мастер. Улучшенная конструкция с более мощным двигателем обеспечивает пиление на глубину до 65 мм, что позволяет резать фанеру, панели и доски большинства типоразмеров. Эргономика рукояток делает работу удобной, а запас мощности и точность реза дарят удовольствие от работы

Применение

Для распиловочных работ по дереву и иным материалам (при установке соответствующего диска) под различными углами, а также под наклоном

На электроинструменты и бензотехнику «ЗУБР» действует расширенная 5-летняя гарантия. 

Служба качества контролирует процесс производства на каждом этапе.

Чтобы добавить отзыв, пожалуйста, зарегистрируйтесь или войдите

Похожие товары

6 900 ₽

Нет в наличии

Нет в наличии

С этим товаром покупают

6 290 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

27 870 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

В наличии

Купить в 1 клик

В наличии

Купить в 1 клик

В наличии

Купить в 1 клик

В наличии

Купить в 1 клик

Распродажа

67 819 ₽

32 720 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

23 452 ₽

11 490 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

New!

21 619 ₽

8 890 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

17 722 ₽

9 250 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

14 698 ₽

6 150 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

10 628 ₽

4 450 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

7 284 ₽

2 990 ₽

В наличии

Купить в 1 клик

New!

5 070 ₽

4 016 ₽

Осталась 1 штука

Купить в 1 клик

Зарядные устройства Umidigi Bison GT — Автомобильные, настенные, самолетные, аварийные зарядные устройства Umidigi Bison GT

Зарядные устройства Umidigi Bison GT — Автомобильные, настенные, самолетные, аварийные зарядные устройства Umidigi Bison GT | BoxWave
Главная страница BoxWave

Предлагаем вам продукты завтрашнего дня уже сегодня

Дорожные зарядные устройства Umidigi Bison GT

Показаны 1-24 из 24 продуктов

Сортировать по
Самые популярныеЦена от низкой до высокойЦена от высокой до низкойСамая новая Первая от A до ZРекомендуется

• Настенное зарядное устройство Bison GT Direct™

  27,95 $ 22,95 $

• Блок питания Rejuva Bison GT

  35,95 $ 25,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Зарядное устройство Rejuva Duo Bison GT

  59,95 $ 39,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Двухпортовое автомобильное зарядное устройство Rapid Bison GT USB

  24,95 $ 12,95 $

• • Зимний белый
  • угольно-черный

  WeShare Bison GT PowerPort

  49,95 $ 27,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• WeShare Bison GT PowerPort — 6 портов

  59,95 $ 34,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• • Черный
  • Белый

  3-портовое микро сильноточное автомобильное зарядное устройство для Bison GT

  19,95 $ 14,95 $

• • Ярко-черный
  • Зимний белый

  Блок питания Rejuva (13000 мАч) для Bison GT

  49,95 $ 29,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Двойное сильноточное настенное зарядное устройство для Bison GT

  28,95 $ 18,95 $

• • Серебристый металлик
  • угольно-черный
  • лунно-синий
  • малиново-красный
  • Желтое золото

  Блок питания Rejuva Brite для Bison GT

  44,95 $ 18,95 $

• • Черный
  • Белый
  • Серебро

  Блок питания Rejuva Pro для Bison GT

  69,95 $ 10,00 $

• Настенное зарядное устройство Rejuva для Bison GT

  79,95 $ 54,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• • Зеленый
  • Красный
  • Синий
  • Белый
  • Черный

  Автомобильное зарядное устройство U-n-Me для Bison GT

  32,95 $ 25,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• • 1 Amps — Black»> 2,1 А — черный
  • 2,1 А — белый
  • 3,1 А — белый

  Dual Micro сильноточное автомобильное зарядное устройство для Bison GT

  15,95 $ 9,95 $

• Универсальный PD GAN miniCube (30 Вт)

  39,95 $ 29,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Настенное зарядное устройство PD GaNCharge Bison GT (30 Вт)

  37,95 $ 27,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• • Зимний белый
  • угольно-черный

  Настенное зарядное устройство PD GaNCharge Bison GT (65 Вт)

  59,95 $ 49,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Настенное зарядное устройство PD GaNCharge Bison GT (100 Вт)

  109,95 $ 99,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Настенное зарядное устройство PowerDisplay PD Bison GT (18 Вт)

  34,95 $ 24,95 $

• • Ярко-черный
  • Зимний белый

  Универсальное настенное зарядное устройство International Bison GT PD (65 Вт)

  89,95 $ 79,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Настенное зарядное устройство PowerDisplay Bison GT PD (65 Вт)

  54,95 $ 44,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Блок питания Rejuva 65 Вт Bison GT PD (30 000 мАч)

  92,95 $ 82,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• Блок питания Rejuva 100 Вт Bison GT PD (30 000 мАч)

  115,95 $ 105,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

• PD miniCube (100 Вт) Зарядное устройство Bison GT

  99,95 $ 89,95 $

  БЕСПЛАТНАЯ ДОСТАВКА ПО США

Бесплатная доставка
Доставка по всему миру
Заказы на сумму от 25 долларов США

Молекулярное обнаружение переносимых клещами патогенов у американских бизонов (Bison bison) в Экологическом заповеднике Эль-Уно, Янос, Чиуауа, Мексика

1. Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010. Protección Ambiental—Especies Nativas de México de Flora y Fauna Silvestres—Categorías de Riesgo y Especificaciones para su Inclusión, Exclusión o Cambio—Lista de Especies en Riesgo. [(по состоянию на 16 июня 2021 г.)]. Доступно онлайн: https://dof.gob.mx/nota_detalle_popup.php?codigo=5173091

2. Бойд Д.П. Дипломная работа. Университет Калгари; Калгари, AB, Канада: 2003. Сохранение североамериканских бизонов: статус и рекомендации. [Академия Google]

3. Буш-Ромеро П. В: México y África Desde la Mira de mi Rifle, 1950. 1-е изд. Вадо И., редактор. Графика Панамерикана; Сьюдад-де-Мехико, Мексика: 1958. с. 326. [Google Scholar]

4. Уайт П., Валлен Р.Л., Джеремия К., Треанор Дж.Дж., Блэнтон Д.У. Управление риском передачи йеллоустонского бизона и бруцеллеза — последствия для сохранения и восстановления. биол. Консерв. 2011; 144:1322–1334. doi: 10.1016/j.biocon.2011.01.003. [CrossRef] [Google Scholar]

5. Ньюмарк В. Д. Изоляция охраняемых территорий Африки. Передний. Экол. Окружающая среда. 2008; 6: 321–328. дои: 10.1890/070003. [CrossRef] [Google Scholar]. Польша. пол. Дж. Вет. науч. 2017;20:819–821. [PubMed] [Google Scholar]

7. Лопес-Перес А.М., Санчес-Монтес С., Фоли Дж., Гусман-Корнехо К., Колунга-Салас П., Паско Э., Беккер И., Ла Мора Х.Д.- Д., Ликона-Энрикес Х.Д., Сюзан Г. Молекулярные доказательства Borrelia burgdorferi sensu stricto и Rickettsia massiliae в клещах, собранных на границе раздела домашних и диких хищников в Чиуауа, Мексика. Клещи Tick-Borne Dis. 2019;10:1118–1123. doi: 10.1016/j.ttbdis.2019.05.018. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Санчес-Монтес С., Лопес-Перес А.М., Гусман-Корнехо К., Колунга-Салас П., Беккер И., Дельгадо-де ла Мора Х., Ликона -Энрикес Х.Д., Дельгадо-де ла Мора Д., Карпати С.Е., Пэддок К.Д. и др. Rickettsia parkeri в Dermacentor parumapertus Клещи, Мексика. Эмердж. Заразить. Дис. 2018;24:1108–1111. doi: 10.3201/eid2406.180058. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Колунга-Салас П., Санчес-Монтес С., Гростиета Э., Верде-Аррегития Л.Д., Кабрера-Гарридо М.Ю., Беккер И., Леон — Паниагуа Л. Что исследования диких млекопитающих говорят нам о новых вирусных заболеваниях человека в Мексике? Трансграничный. Эмердж. Дис. 2020;67:33–45. doi: 10.1111/tbed.13336. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Rhyan J.C., Aune K., Roffe T., Ewalt D., Hennager S., Gidlewski T., Olsen S., Clarke R. Патогенез и эпидемиология бруцеллеза желтокаменного бизона: результаты серологических и культуральных исследований взрослых самок и их потомства. Дж. Уайлдл. Дис. 2009 г.;45:729–739. doi: 10.7589/0090-3558-45.3.729. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Молер Дж. Р. Отчет начальника бюро животноводства, патологоанатомическое отделение. Департамент сельского хозяйства; Вашингтон, округ Колумбия, США: 1917. Годовые отчеты. [Google Scholar]

12. Келлер А., Грефен А., Болл М., Мацас М., Буагерин В., Майкснер Ф., Лейдингер П., Бакес К., Хайрат Р., Форстер М. и др. . Новое понимание происхождения и фенотипа тирольского ледяного человека, полученное с помощью секвенирования всего генома. Нац. коммун. 2012;3:698. doi: 10.1038/ncomms1701. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Дантас-Торрес Ф., Хомель Б.Б., Отранто Д. Клещи и клещевые заболевания: точка зрения «Единое здоровье». Тенденции Паразитол. 2012; 28: 437–446. doi: 10.1016/j.pt.2012.07.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Sosa-Gutierrez C.G., Vargas-Sandoval M., Torres J., Gordillo-Pérez M.G. Возбудители клещевого риккетсиоза у квестирующих клещей, изъятых у людей и животных в Мексике. Дж. Вет. науч. 2016;17:353–360. doi: 10.4142/jvs.2016.17.3.353. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Гарсия-Васкес З., Ортега-С Х.А., Канту-Коваррувиас А., Москеда Дж., Хьюитт Д.Г., Деянг Р.В., Кэмпбелл Т.А., Брайант Ф.К. Клещевые заболевания в синтопных популяциях ланей ( Dama dama ) и осевых оленей ( Axis axis ) в Северной Мексике. Дж. Уайлдл. Дис. 2015; 51: 527–529. doi: 10.7589/2014-07-183. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Ojeda-Chi M.M., Rodriguez-Vivas R.I., Esteve-Gasent MD, de León A.A.P., Modarelli J.J., Villegas-Perez S.L. Ehrlichia canis у собак в Мексике: распространенность, заболеваемость, коинфекция и сопутствующие факторы. Комп. Иммунол. микробиол. Заразить. Дис. 2019;67:101351. doi: 10.1016/j.cimid.2019.101351. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Acosta R., Guzmán-Cornejo C., Cisneros FAQ, Quiñonez A.A.T., Fernández J.A. Новые записи эктопаразитов для Мексики и их распространенность у горной бурозубки Sorex monticolus (Eulipotyphla: Soricidae) в Серро-дель-Мохинора, Западная Сьерра-Мадре, Чиуауа, Мексика. Зоотакса. 2020;4809: 393–396. doi: 10.11646/zootaxa.4809.2.11. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Гулия-Насс М., Нусс А., Мейер Дж. М., Соненшайн Д. Э., Роу Р. М., Уотерхаус Р. М., Саттелл Д. Б., Де Ла Фуэнте Дж., Рибейро Дж., Меги К. и др. Геномный анализ клещевого переносчика болезни Лайма Ixodes scapularis. Нац. коммун. 2016;7:10507. doi: 10.1038/ncomms10507. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Еремеева М.Е., Боссерман Э.А., Демма Л.Дж., Замбрано М.Л., Блау Д.М., Даш Г. Выделение и идентификация Rickettsia massiliae из Rhipicephalus sanguineus Клещи, собранные в Аризоне. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2006; 72: 5569–5577. doi: 10.1128/AEM.00122-06. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Montiel-Armendáriz S., Verdugo C., Juache-Villagrana A.E., Jiménez-Vega F., Quezada-Casasola A., Vital-García C. ., Эскарсега-Авила А. Молекулярная идентификация и морфологические вариации Dermacentor albipictus , собранных у двух видов оленей в северной Мексике. Эксп. заявл. Акарол. 2021; 84: 473–484. дои: 10.1007/s10493-021-00613-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Йонгеян Ф., Уйленберг Г. Глобальное значение клещей. Паразитология. 2004; 129:S3–S14. doi: 10.1017/S0031182004005967. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Mutz I. Las Infecciones Emergentes Transmitidas por garrapatas. Анна. Нестле 2009;67:123–134. doi: 10.1159/000287275. [CrossRef] [Google Scholar]

23. Мацумото К., Гжещук А., Броуки П., Рауль Д. Rickettsia raoultii и Anaplasma phagocytophilum в Dermacentor reticulatus клещей, собранных в Беловежской пуще европейского зубра ( Bison bonasus bonasus ), Польша. клин. микробиол. Заразить. 2009; 15: 286–287. doi: 10.1111/j.1469-0691.2008.02238.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Biernat B., Karbowiak G., Stańczak J., Masny A., Werszko J. Первое обнаружение РНК вируса клещевого энцефалита (ВКЭ) в Dermacentor reticulatus клещей, собранных у низинного европейского бизона ( Bison bonasus bonasus Л.) Акта Паразитол. 2016;61:130–135. doi: 10.1515/ap-2016-0017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. De la Fuente J., Thomas E.J.G., Bussche R.A.V.D., Hamilton R.G., Tanaka E.E., Druhan S.E., Kocan K.M. Характеристика Anaplasma marginale , выделенного от североамериканского бизона. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2003;69:5001–5005. doi: 10.1128/AEM.69.8.5001-5005.2003. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Scoles G.A., McElwain T.F., Rurangirwa F.R., Knowles D.P., Lysyk T.J. Изолят канадского бизона из Anaplasma marginale (Rickettsiales: Anaplasmataceae) не передается Dermacentor andersoni (Acari: Ixodidae), тогда как клещи из двух канадских популяций D. andersoni являются компетентными переносчиками американского штамма. Дж. Мед. Энтомол. 2006; 43: 971–975. doi: 10.1603/0022-2585(2006)43[971:ACBIOA]2.0.CO;2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Гжещук А., Зиарко С., Прокопович Д., Марек Радзивон П. Доказательства Anaplasma phagocytophilum 9Инфекция 0003 европейских зубров в Беловежской первобытной пуще, Польша. Мед. Вет. 2004; 60: 600–601. [Google Scholar]

28. Бернат Б., Карбовяк Г. Исследование встречаемости РНК вируса клещевого энцефалита у зубров ( Bison bonasus ), элиминированных в Беловежской пуще (северо-восток Польши) в 2005–2009 гг. . Анна. Паразитол. 2014;60:99–102. [PubMed] [Google Scholar]

29. Муринг М., Сэмюэл В. Стратегии защиты от клещей у бизонов: роль ухода и шерсти. Поведение. 1998;135:693–718. doi: 10.1163/156853998792640413. [CrossRef] [Google Scholar]

30. Lanier J., Grandin T. Ph.D. Тезис. Университет штата Колорадо; Форт-Коллинз, Колорадо, США: 2015. Успокоение американского бизона ( Bison bison ) во время обычного обращения. [Google Scholar]

31. Дуйсен Э., Ирвин К., Йодер А., Топлифф К., Келлинг К., Раджарам С. Оценка опасностей, связанных с племенными рабочими бизонами, с использованием доверенных координаторов исследований. Дж. Агромед. 2017;22:337–346. дои: 10.1080/1059924X.2017.1353937. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Биркенхойер А.Дж., Леви М.Г., Брайтшвердт Э.Б. Разработка и оценка полугнездной ПЦР для обнаружения и дифференциации ДНК Babesia gibsoni (азиатский генотип) и B. canis в образцах крови собак. Дж. Клин. микробиол. 2003;41:4172–4177. doi: 10.1128/JCM.41.9.4172-4177.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Улучшенное молекулярное обнаружение инфекций Babesia у животных с использованием нового количественного диагностического анализа ПЦР в реальном времени, нацеленного на митохондриальную ДНК. Векторы паразитов. 2017;10:128. doi: 10.1186/s13071-017-2064-1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Цао Дж.И., Хамер С.А., Хан С., Сидж Дж.Л., Хиклинг Г.Дж. Вклад хозяев дикой природы в рост числа клещей и клещевых заболеваний в Северной Америке. Дж. Мед. Энтомол. 2021; 58: 1565–1587. doi: 10.1093/jme/tjab047. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Розенберг Р., Линдси Н.П., Фишер М., Грегори С.Дж. , Хинкли А.Ф., Мид П.С., Паз-Бейли Г., Уотерман С.Х., Дрекслер Н.А., Керш Г.Дж., и др. др. Основные показатели жизнедеятельности: тенденции зарегистрированных случаев трансмиссивных заболеваний — США и территории, 2004–2016 гг. MMWR Морб. Смертный. еженедельно. 2018;67:496–501. doi: 10.15585/mmwr.mm6717e1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Кугелер К.Дж., Шварц А.М., Делори М.Дж., Мид П.С., Хинкли А.Ф. Оценка частоты диагнозов болезни Лайма, США, 2010–2018 гг. Эмердж. Заразить. Дис. 2021; 27: 616–619. doi: 10.3201/eid2702.202731. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Fesler M.C., Shah J.S., Middelveen M.J., Du Cruz I., Burrascano J.J., Stricker R.B. Болезнь Лайма: обнаружено разнообразие видов боррелий в Калифорнии и Мексике Используя новый анализ иммуноблотов. Здравоохранение. 2020;8:97. doi: 10.3390/healthcare8020097. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Колунга-Салас П., Санчес-Монтес С. , Волков П., Руиз-Ремихио А., Беккер И. Болезнь Лайма и возвратный тиф у Мексика: обзор инфекций человека и диких животных. ПЛОС ОДИН. 2020;15:e0238496. doi: 10.1371/journal.pone.0238496. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Guzmán-Cornejo C., Robbins R.G., Guglielmone A.A., Montiel-Parra G., Rivas G., Pérez T.M. Dermacentor (Acari, Ixodida, Ixodidae) Мексики: хозяева, географическое распространение и новые записи. ZooKeys. 2016;569: 1–22. doi: 10.3897/zookeys.569.7221. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Esteve-Gassent MD, De Leon AAP, Romero-Salas D., Feria-Arroyo TP, Epatino R., Ecastro-Arellano I., Gordillo -Перес Г., Оклер А., Эгулсби Дж., Родригес-Вивас Р.И. и др. Патогенный ландшафт трансграничных зоонозных заболеваний на границе Мексики и США вдоль реки Рио-Гранде. Передний. Здравоохранение. 2014;2:177. doi: 10.3389/fpubh.2014.00177. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Halsey S.J., Allan B.F., Miller J.R. Роль Ixodes scapularis, Borrelia burgdorferi и диких животных-хозяев в распространенности болезни Лайма: количественный обзор. Клещи Tick-Borne Dis. 2018;9:1103–1114. doi: 10.1016/j.ttbdis.2018.04.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Кастеллоу А.Х., Ченни Э.Ф., Варела-Стокс А.С. Возбудители клещевых болезней в различных диких животных из Миссисипи. Векторные зоонозные заболевания. 2011; 11: 439–442. doi: 10.1089/vbz.2009.0221. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

43. Ю С., Модарелли Дж., Томечек Дж. М., Френч Дж. Т., Хилтон С., Эстев-Гасент М. Д. Распространенность распространенных клещевых патогенов у белохвостых оленей и койотов в южном Техасе. Междунар. Дж. Паразитол. Паразиты Wildl. 2020;11:129–135. doi: 10.1016/j.ijppaw.2020.01.005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Yabsley M.J., Shock B.C. Естественная история зоонозных бабезий: роль резервуаров дикой природы. Междунар. Дж. Паразитол. Паразиты Wildl. 2012;2:18–31. doi: 10.1016/j.ijppaw.2012.11.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Адашек Л., Дзенгель Б., Кшисяк М., Скшипчак М., Адашек М., Станец М., Вылупек Д., Винярчик С. Обнаружение ДНК Borrelia burgdorferi sensu lato в крови диких бизонов из Беловежской пущи на востоке Польши. пол. Дж. Вет. науч. 2014; 17:713–715. doi: 10.2478/pjvs-2014-0103. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Оливейра К.А., Пинтер А., Медина-Санчес А., Боппана В.Д., Викель С.К., Сайто Т.Б., Шелите Т., Блантон Л., Попов В., Тил П.Д. , и другие. Amblyomma imitator Клещи как переносчики Rickettsia rickettsii , Мексика. Эмердж. Заразить. Дис. 2010;16:1282–1284. doi: 10.3201/eid1608.100231. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Detección de Borrelia burgdorferi sensu lato en perros y sus garrapatas en comunidades villages de Yucatán, México. преподобный биол. Троп. 2017; 66: 428–437. doi: 10.15517/rbt.v66i1.27776. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

48. Левин М.Л., Земцова Г.Е., Киллмастер Л.Ф., Снеллгроув А., Шумахер Л.Б. Вектор компетентности Amblyomma americanum (Acari: Ixodidae) для Rickettsia rickettsii . Клещи Tick-Borne Dis. 2017; 8: 615–622. doi: 10.1016/j.ttbdis.2017.04.006. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Левин М.Л., Форд С.Л., Харцер К., Крапиуная Л., Стэнли Х., Снеллгроув А.Н. Минимальная продолжительность прикрепления клеща достаточна для передачи инфекции Rickettsia rickettsii (Rickettsiales: Rickettsiaceae) от основного переносчика Dermacentor variabilis (Acari: Ixodidae): пересмотр продолжительности реактивации риккетсиозов у ​​переносчика. Дж. Мед. Энтомол. 2019; 57: 585–594. doi: 10.1093/jme/tjz191. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Еремеева М.Е., Замбрано М.Л., Анайя Л., Беати Л., Карпати С.Е., Сантос-Сильва М. М., Сальседа Б., Макбет Д., Ольгин Х., Даш Г. и др. Риккетсия риккетсии у Rhipicephalus Ticks, Мехикали, Мексика. Дж. Мед. Энтомол. 2011;48:418–421. дои: 10.1603/ME10181. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Кобаяши А., Ивасаки Х. Ноги человека, укушенные множественными коричневыми собачьими клещами, Rhipicephalus sanguineus . IDCases. 2017; 9:8. doi: 10.1016/j.idcr.2017.04.007. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Тиноко-Грация Л., Родригес-Пеньюэлас П., Хори-Осима С., Медина-Басульто Г.Э., Лопес-Валенсия Г., Тамайо- Соса А.Р., Баррерас-Серрано А., Рентерия-Евангелиста Т.Б., Мелгарехо Т., Филд-Кортасарес Дж. Примеры молекулярных доказательств боррелиоза и лептоспироза у человека в Синалоа, Мексика. Преподобный Энферм. инфекции Педиатр. 2020; 33: 1727–1731. [Академия Google]

53. Станек Г., Вормсер Г.П., Грей Дж., Стрле Ф. Боррелиоз Лайма. Ланцет. 2012; 379: 461–473. doi: 10.1016/S0140-6736(11)60103-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Ченери Э.С., Хармс Н.Дж., Мандрак Н.Е., Молнар П.К. Первые записи о личинках Dermacentor albipictus , собранных путем пометки в Юконе, Канада. Векторы паразитов. 2020;13:565. doi: 10.1186/s13071-020-04425-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Асман М., Новак М., Кубер П., Стшелчик Дж., Силман Э., Силман П., Трапп Г., Сиуда К. , Соларз К., Вичковски А. Риск воздействия Anaplasma phagocytophilum , Borrelia burgdorferi sensu lato , Babesia sp. и коинфекции у клещей Ixodes ricinus на территории Неполомицкого леса (юг Польши) Ann. Паразитол. 2013;59:13–19. [PubMed] [Google Scholar]

56. Дантас-Торрес Ф. Изменение климата, биоразнообразие, клещи и клещевые заболевания: эффект бабочки. Междунар. Дж. Паразитол. Паразиты Wildl. 2015; 4: 452–461. doi: 10.1016/j.ijppaw.2015.07.001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Гудман Дж.Л., Юркович П., Крамбер Дж.М., Джонсон Р. К. Молекулярное обнаружение персистентной Borrelia burgdorferi в моче пациентов с активной болезнью Лайма. Заразить. Иммун. 1991; 59: 269–278. doi: 10.1128/iai.59.1.269-278.1991. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Schmidt B.L. ПЦР в лабораторной диагностике инфекций человека Borrelia burgdorferi . клин. микробиол. 1997; 10:185–201. doi: 10.1128/CMR.10.1.185. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Соареш Х.С., Барбьери А.Р.М., Мартинс Т.Ф., Минервино А., Де Лима Дж.Т.Р., Марсили А., Дженнари С., Лабруна М.Б. Клещи и риккетсиозы в дикой природе двух регионов бразильской Амазонии. Эксп. заявл. Акарол. 2014;65:125–140. doi: 10.1007/s10493-014-9851-6. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Ниери-Бастос Ф.А., Марсили А., Де Соуза Р., Паддок К.Д., Лабруна М.Б. Филогенетические доказательства существования множественных штаммов Rickettsia parkeri в Новом Свете. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2018;84:e02872-17. doi: 10.1128/AEM.02872-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Фурнье П.-Э., Дамлер Дж.С., Греуб Г., Чжан Дж., У Ю., Рауль Д. Основанные на последовательности генов критерии идентификации новых изолятов риккетсий и описание Rickettsia heilongjiangensis sp. ноябрь Дж. Клин. микробиол. 2003; 41: 5456–5465. doi: 10.1128/JCM.41.12.5456-5465.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Тадепалли М., Винсент Г., Хии С., Ватароу С., Грейвс С., Стенос Дж. Молекулярные доказательства новой группы пятнистой лихорадки Риккетсия Виды в Amblyomma albolimbatum Клещи галечного сцинка ( Tiliqua rugosa ) на юге Западной Австралии. Возбудители. 2021;10:35. doi: 10.3390/pathogens10010035. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Ортега-Моралес А.И., Нава-Рейна Э., Авила-Родригес В., Гонсалес-Альварес В.Х., Кастильо-Мартинес А., Силлер К. К. Кабесас-Крус А., Дантас-Торрес Ф., Алмасан К. Обнаружение Rickettsia spp. в Rhipicephalus sanguineus (sensu lato), полученный от бродячих собак в штате Коауила на севере Мексики. Векторы паразитов. 2019;12:130. doi: 10.1186/s13071-019-3377-z. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Бок Р., Джексон Л., Де Вос А., Йоргенсен В. Бабезиоз крупного рогатого скота. Паразитология. 2004; 129:S247–S269. doi: 10.1017/S0031182004005190. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Леон А.А.П.Д., Стрикман Д.А., Ноулз Д.П., Фиш Д., Такер Э., де ла Фуэнте Дж., Краузе П.Дж., Викель С.К., Миллер Р.С., Вагнер Г.Г., и др. др. Подход One Health для определения потребностей в исследованиях бабезиозов крупного рогатого скота и человека: отчет семинара. Векторы паразитов. 2010;3:36. doi: 10.1186/1756-3305-3-36. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Де Леон А.А.П., Тил П.Д., Оклер А.Н., Мессенджер М.Т., Герреро Ф. Д., Шустер Г., Миллер Р.Дж. Комплексная стратегия устойчивого искоренения клещей крупного рогатого скота в США необходима для смягчения последствий глобальных изменений. Передний. Физиол. 2012;3:195. doi: 10.3389/fphys.2012.00195. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Томас Д.Б., Клафке Г., Буш Дж.Д., Олафсон П.У., Миллер Р.А., Москеда Дж., Стоун Н.Е., Скоулз Г., Вагнер Д.М., Перес — Де-Леон А. Отслеживание роста устойчивости к акарицидам в инвазивной популяции клещей, вызывающих лихорадку крупного рогатого скота (Acari: Ixodidae), и внедрение ПЦР-анализа в реальном времени для быстрого выявления мутаций устойчивости к генотипу. Анна. Энтомол. соц. Являюсь. 2020;113:298–309. doi: 10.1093/aesa/saz053. [CrossRef] [Google Scholar]. [(по состоянию на 10 мая 2021 г.)]; Доступно в Интернете: https://www.aphis.usda.gov/aphis/ourfocus/animalhealth/animal-disease-information/cattle-disease-information/us-mex-bnc

69. Торговля домашними животными, паразитарные заболевания и экзотические животные Импорт. [(по состоянию на 16 октября 2021 г.)]. Доступно в Интернете: https://www.usaha.org/

70. Бабезиоз крупного рогатого скота. [(по состоянию на 16 октября 2021 г.)]. Доступно на сайте: https://www.iastate.edu/

71. Салабаррия Ф.Ф., Годшаев А., Хименес Т. Proceso hemolitico agudo en bisontes ( Bison bison ) causada por Babesia argentina . Преподобный Куб. Cиенц. Вет. 1981; 12: 165–170. [Google Scholar]

72. Zaugg J.L., Kuttler K.L. Экспериментальные инфекции Babesia bigemina у американских бизонов. Дж. Уайлдл. Дис. 1987; 23: 99–102. дои: 10.7589/0090-3558-23.1.99. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Findlay C., Begg T. Redwater у американского бизона, вызванного Babesia major. Вет. Рек. 1977; 100:406. doi: 10.1136/vr.100.19.406-a. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

74. Паулаускас А., Александравичене А., Липатова И., Гричувене Л., Кибиша А., Жукаускене Ю., Радзиевская Ю. Молекулярное обнаружение Babesia spp. у европейских зубров ( Bison bonasus ) и их клещей. Клещи Tick-Borne Dis. 2021;12:101807. doi: 10.1016/j.ttbdis.2021.101807. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

75. Лира-Амайя Дж.Дж., Хесус Поланко-Мартинес Д., Кастанья-Арриола Р.О., Рамос-Арагон Дж.А., Лара-Хернандес Дж.Д., Препочядо-де-Ла-Торре Ф., Рохас-Мартин С., Антонио Алвес-Мар. ., Ramón Bautista-Garfias C., Figueroa-Millan JV Prevalencia serológica y молекулярное де Babesia bovis , Babesia bigemina y Anaplasma marginale en búfalos de agua mantenidos en zonas de al та incidencia де garrapatas. Энтомол. мекс. 2017; 4: 627–632. [Академия Google]

76. Купер С.М., Перотто-Бальдивиесо Х., Оуэнс М.К., Мик М.Г., Фигероа-Паган М. Распространение и взаимодействие белохвостого оленя и крупного рогатого скота в полузасушливой системе выпаса. Агр. Экосистем. Окружающая среда. 2008; 127:85–92. doi: 10.1016/j.agee.2008.03.004. [CrossRef] [Google Scholar]

77. Triguero-Ocaña R. , Barasona J.A., Carro F., Soriguer R., Vicente J., Acevedo P. Пространственно-временные тенденции частоты межвидовых взаимодействий между домашними и дикими копытными из средиземноморской Испании. ПЛОС ОДИН. 2019;14:e0211216. doi: 10.1371/journal.pone.0211216. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Obregón D., Cabezas-Cruz A., Armas Y., Silva J.B., Fonseca A.H., André M.R., Alfonso P., Oliveira M.C., Machado R.Z., Corona-González B. Высокий уровень коинфекции Babesia bovis , Babesia bigemina и Anaplasma marginale у водяных буйволов на Западной Кубе. Паразитол. Рез. 2019; 118: 955–967. doi: 10.1007/s00436-018-06194-6. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

79. Хаймес-Дуэньес Х., Триана-Чавес О., Ольгин-Роча А., Тобон-Кастаньо А., Мехия-Харамильо А.М. Молекулярный надзор и филогенетические признаки Babesia bigemina и Babesia bovis у крупного рогатого скота ( Bos taurus ) и водяных буйволов ( Bubalus bubalis ) из Колумбии. Векторы паразитов. 2018;11:510. doi: 10.1186/s13071-018-3091-2. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Клещевые гемопаразиты у африканских буйволов ( Syncerus caffer ) из двух районов дикой природы в Северной Ботсване. Векторы паразитов. 2015;8:26. doi: 10.1186/s13071-014-0627-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

81. Эспиназе М.П., ​​Хеллард Э., Хорак И.Г., Камминг Г. Домашние млекопитающие способствуют сетям передачи патогенов через клещей в дикой природе Южной Африки. биол. Консерв. 2018;221:228–236. doi: 10.1016/j.biocon.2018.03.017. [CrossRef] [Google Scholar]

82. Атиф Ф.А. Anaplasma marginale и Anaplasma phagocytophilum : Риккетсиальные патогены, имеющие значение для ветеринарии и здравоохранения. Паразитол. Рез. 2015;114:3941–3957. doi: 10.1007/s00436-015-4698-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

83. Kocan K.M., De La Fuente J., Thomas E.J.G., Bussche R.A., Hamilton R. G., Tanaka E.E., Druhan S.E. Недавние исследования по характеристике Anaplasma marginale , выделенного от североамериканского бизона. Анна. Н. Я. акад. науч. 2004; 1026: 114–117. дои: 10.1196/Анналы.1307.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Коссио-Баюгар Р., Родригес С.Д., Гарсия-Ортис М.А., Гарсия-Тапия Д., Абойтес-Торрес Р. Распространенность анаплазмоза крупного рогатого скота в северном штате Веракрус, Мексика. Пред. Вет. Мед. 1997; 32: 165–170. doi: 10.1016/S0167-5877(97)00016-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

85. Родригес-Вивас Р., Мата-Мендес Ю., Перес-Гутьеррес Э., Вагнер Г. Влияние факторов управления на серопревалентность Anaplasma marginale в Bos indicus крупного рогатого скота в мексиканских тропиках. Троп. Аним. Здоровье Прод. 2004; 36: 135–143. doi: 10.1023/B:TROP.0000012105.19518.80. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

86. Мартинес-Окампо Ф., Кирос-Кастаньеда Р.Э., Амаро-Эстрада И., Дантан-Гонсалес Э. , Де Ла Торре Х.Ф.П., Родригес-Камарильо С. Полный геном Секвенирование мексиканских штаммов Anaplasma marginale : подход к возбудителю анаплазмоза крупного рогатого скота. Междунар. Дж. Геном. 2020;2020:5

9. дои: 10.1155/2020/5

9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

87. Райан Дж. К., Спракер Т. Р., Китчен Д. Н., Карлтон В. В., Туит Дж. Возникновение болезней из водоемов дикой природы. Вет. Патол. 2010;47:34–39. doi: 10.1177/0300985809354466. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

88. Guerrero H.Y., Rojas M.O., Wasserman M. Evaluación de dos métodos para la separación de RNA mensajero de Plasmodium falciparum . Биомедика. 1998; 18:55–65. doi: 10.7705/biomedica.v18i1.971. [CrossRef] [Google Scholar]

. , Bartonella spp., Babesia microti и Anaplasma phagocytophila в клещах Ixodes scapularis , собранных в Северном Нью-Джерси. Дж. Клин. микробиол. 2004;42:2799–2801. doi: 10. 1128/JCM.42.6.2799-2801.2004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

90. Регнери Р.Л., Спруилл К.Л., Пликайтис Б.Д. Генотипическая идентификация риккетсий и оценка внутривидовой дивергенции последовательностей участков двух генов риккетсий. Дж. Бактериол. 1991; 173: 1576–1589. doi: 10.1128/jb.173.5.1576-1589.1991. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

91. Фигероа Дж., Чивес Л., Джонсон Г., Буенинг Г. Анализ на основе мультиплексной полимеразной цепной реакции для обнаружения Babesia bigemina , Бабезия бычья и ДНК Anaplasma marginale в крови крупного рогатого скота. Вет. Паразитол. 1993; 50: 69–81. doi: 10.1016/0304-4017(93)

-B. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

92. Torioni De Echaide S., Knowles D.P., McGuire T.C., Palmer G.H., Suarez C.E., McElwain T.F. Обнаружение естественного заражения крупного рогатого скота Anaplasma marginale в эндемичном регионе с помощью гнездовой ПЦР и конкурентного твердофазного иммуноферментного анализа с использованием рекомбинантного основного поверхностного белка 5.